CENTRO DE BACHILLERATO TECNOLÓGICO industrial y de servicios No. 199

"EMILIANO ZAPATA SALAZAR"

MIXQUIAHUALA HGO. 

BIOLOGÍA CONTEMPORÁNEA
 LABORATORIO CLÍNICO 
6 DM

CÉLULAS

Las células eucariotas poseen un núcleo definido con el material genético organizado en cromosomas. Todos los organismos multicelulares están formados por células eucariotas y también muchos organismos unicelulares y coloniales.

MATERIAL:                                       SUSTANCIAS:

1 microscopio óptico                           Agua destilada

5 portaobjetos                                      Reactivos de Gram: cristal violeta, lugol, 

5 cubreobjetos                                     alcohol-cetona, safranina.

1 agitador                                            Sudan III

1 bisturí con navaja                             Yogurt casero

1 vaso de precipitado de 100 ml         Agua de charco o de florero

2 goteros                                             Cebolla, papa, plátano, manzana, papaya,

1 servilleta de papel                            aguacate, nuez, zanahoria, betabel, flores de gladiola

1 trozo de papel seda                          roja, elodea (planta acuática que llaman cola de zorro).

1 caja de petri 

PROCEDIMIENTO:
Células bacterianas
Las bacterias con células muy pequeñas (1 a 3 micrómetros) y pueden tener forma esférica (cocos), de bastón (bacilos) o espiral (espirilos).
1- Haz un frotis de la muestra de yogurt.
2- Realiza una tincion de Gram.
3- Coloca un portaobjetos y obsérvalo a inmersión.
4- Identifica la forma de la célula, la pared y el citoplasma.


Bacterias verdes- azules (cianobacterias) 
Las cianobacterias son organismos procariontes fotosinteticos. La clorofila que contiene esta dispersa en el citoplasma. Ademas de la clorofila, las cianofitas poseen pigmentos accesorios (carotenoides y ficobilinas)
1- coloca sobre un portaobjetos una gota de agua de charco estancado.
2- coloca un cubreobjetos y objetos y observa al microscopio con el seco fuerte.


Aminoplastos en plátano 
Las células del plátano también poseen aminoplastos que almacenan almidón pero que se diferencian de los aminoplastos de la papa en su morfología.
1- raspa una pequeña cantidad de tejido de la superficie del fruto y dispersarla en el portaobjetos.
2- agrega una gota de lugol, coloca un cubreobjetos y observa con seco débil y fuerte.
3- compara la morfología de los aminoplastos de papa y plátano
4- repite el mismo proceso con manzana y papaya.

Cromoplastos de zanahoria y betabel.
En la zanahoria y el betabel, asi como en otras partes de distintas especies de plantas, se encuentran cromoplastos que contienen pigmentos amarillos, naranjas o rojos, llamados carotenos.
1- corta una delgada capa de tejido de la porción mas extrema de la zanahoria, colócala sobre una gota de agua en el portaobjetos y acopla un cubreobjetos.
2- observa en el microscopio con el seco débil y fuerte.
3- repite el procedimiento con el betabel.


Cromoplastos en flores coloridas.
Las flores de color entre azul y rojo contienen en los cromoplastos unos pigmentos llamados antoclaninas.
1- desprende la epidermis lo mas delgada que sea posible de una flor colorida, puede ser gladiola, colócala sobre el portaobjetos con una gota de agua destilada y cúbrela con el cubreobjetos.
2- observa con seco débil y seco fuerte.

Oleaplastos en células de aguacate o nuez.
Son plastidios que almacenan aceites como reserva de compuestos energéticos.
1- haz un raspado de aguacate y coloca una pequeña porción sobre un portaobjetos con una gota de agua.
2- agrega una gota de Sudan III y observa con seco débil y seco fuerte, los oleoplastos se ven de color naranja.
3- repetir el procedimiento con la nuez.


Pared celular y núcleos en células de catafilia de cebolla.
La cebolla es un tallo del cual nacen las hojas modificadas llamadas catafilias, que no poseen clorofila y almacenan una gran cantidad de carbohidratos.
1- desprende con una pinza la epidermis interna de un trozo de catafilia de cebolla, colócala sobre un portaobjetos añadiendo una gota de agua y una de lugol, y acopla un cubreobjetos.
2- observa con objetivos seco débil y seco fuerte.

Cloroplastos y pared celular en células de hoja de elodea.
Las hojas de elodea se pueden observar al MO sin ninguna preparación previa ya que están formadas por dos capaz de células.
1- coloca una hojita de elodea sobre un portaobjetos, agrégale una gota de agua y colocale un cubreobjetos.
2- observar en seco débil y seco fuerte.

Aminoplastos en tubérculos de papa.
Los aminoplastos son plastidios que contiene el almidón presente en el tubérculo de la papa.
1-  corta un trozo de tubérculo de papa y raspa la superficie de corte con una hoja de afeitar o de bisturí, coloca el raspado en una gota de agua cobre un cubreobjetos, agrega una gota de lugol y acopla un cubreobjetos.
2- observar con seco débil y seco fuerte.
3- localiza los aminoplastos teñidos de azul.


EVIDENCIAS:

PLATANO







PAPA

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MIXQUIAHUALA HGO.

LABORATORIO CLÍNICO

6 DM

BIOMOLECULAS.

En esta actividad aplicaras la metodología para comprender y resolver problemas de su entorno utilizando las ciencias experimentales, ademas de que seguirás normas de seguridad cuando uses y manejes sustancias, instrumentos y equipos en el laboratorio de química y biología.

INTRODUCCIÓN:
Entre los compuestos fundamentales de la materia viva de las células encontramos los carbohidratos, lípidos, y proteínas; por esta razón, los alimentos que consumen todos los heterotrofos, incluido el ser humano, deben contener necesariamente estas macromoleculas.
Mediante el uso de pruebas químicas sencillas se pueden identificar en los alimentos la presencia de estas macromoleculas.

OBJETIVO:
El alumno distinguirá en forma practica que alimentos contienen carbohidratos y cuales proteínas y grasas.

MATERIALES:                                                               SUSTANCIAS: Para carbohidratos
- 10 tubos de ensaye                                                    Reactivo de Fehling
- 1 gradilla                                                                   Ácido clorhídrico al 50%
- 2 vasos de precipitado de 100 ml                             Lugol (solución alcohólica de yodo)
- 1 agitador                                                                
- 1 mechero de Bunsen                                               Para proteínas:
- 2 pinzas para tubo de ensaye                                    Reactivo de Biuret
- 1 gotero                                                                    Ácido nítrico concentrado
- 1 pliego de papel estraza                                          Hidróxido de amonio concentrado

  Para lipidos:
                 Sudan II

MUESTRAS DE ALIMENTOS:
- Harinas (trigo)
- Frutas (manzana)
- Verduras (zanahoria)
- Carnes (hígado de pollo)
- Lácteos (queso)
- Semillas (haba)

De preferencia que los alimentos estén hervidos, a excepción de las frutas.
Trabajaras con cantidades suficientes para que alcances a observar las reacciones, pero que no pongan en riesgo su integridad física.

PROCEDIMIENTO:
Reacciones para identificar carbohidratos.

1- Prueba de Lugol (se utiliza para identificar almidones)
- Coloca una pequeña cantidad de la muestra en un tubo de ensayo.
- Agrega dos gotas de Lugol
- Observa el color que toma la muestra al reaccionar con el Lugol.
- Repite la prueba en por lo menos 5 alimentos diferentes.
- Anota los resultados en la tabla de registro.
Si la muestra contiene almidón, con el Lugol adquirirá una coloración azul oscuro (prueba positiva); si no, tomara el color ámbar del reactivo (prueba negativa).
Los residuos contienen almidones y yoduros, que de acuerdo con normas ecológicas ECOL se pueden verter directamente al desagüe.

2- Prueba de Fehling (se utiliza para identificar azucares reductores)
- Agrega 0.5 ml de solución de Fehling A y 0.5 ml de Fehling B a una pequeña porción de muestra colocada en un tubo de ensaye.
- Agrega 2 ml de agua si la muestra es solida.
- Calienta a ebullición por 2 min, cuidando que la muestra no se proyecte. El calentamiento puede realizarse en baño maría, y la boca de los tubos debe estar dirigida donde no haya personas.
- Observa el color de la reacción y anota los resultados.
- Repite la prueba con por los menos 5 alimentos diferentes. Puedes preparar todos los tubos y meterlos juntos al baño maría.
Si la muestra contiene azucares reductores, al reaccionar con el reactivo se formara un precipitado café rojizo (prueba positiva); si no, la muestra queda de color azul del reactivo (prueba negativa).
Los residuos contienen cobre, por lo que la parte liquida debe colocarse en un contenedor plástico para su tratamiento o almacenado temporal, hasta que pueda desecharse correctamente.

Reacciones para identificar proteínas.

1- Prueba de Biuret (se utiliza para identificar proteínas y polipeptidos, no menores de tres aminoácidos, en solución o al estado solido)
- Agrega 1 ml de reactivo de Biuret a una pequeña porción de muestra colocada en cada tubo de ensaye.
- Observa la coloración que toma la muestra.
- Anota los resultados
- Repite la prueba en por lo menos 5 alimentos diferentes.
Si en la muestra hay proteínas se observara que la muestra toma una coloración violeta o morada (prueba positiva) si se queda de color azul, quiere decir que en la muestra no hay proteínas (prueba negativa)
Los residuos contienen cobre, por lo que la parte liquida debe colocarse en un contenedor plástico para su tratamiento o almacenado temporal, hasta que pueda desecharse correctamente.

2- Reacción xantoproteica (se utiliza para identificar proteínas que contienen aminoácidos aromáticos)
- Agregar 1 ml de ácido nítrico concentrado a una pequeña porción de muestra colocada en un tubo de ensaye, calienta con precaución, sujetando el tubo con unas pinzas para tubo de ensaye, y metiendo y sacando el tubo de la flama para evitar que se proyecte la solución, y dirigiendo la boca hacia donde no haya personas. Puedes calentarlos en baño maría. Espera que enfrié.
- Deja resbalar por las paredes del tubo 1 ml de hidróxido de amonio (no respires los vapores) sin agitar, de tal forma que se formen dos capas.
- Anota los resultados
- Repite la prueba en por lo menos 5 alimentos diferentes.
Si en la muestra hay proteínas, se formara un anillo de color naranja entre las capas formadas por el ácido y el hidróxido (prueba positiva).
Los residuos contienen un ácido y una base, por lo que mezcla con mucho cuidado las dos capas para que ambas soluciones (ácido y base) se neutralicen y puedas desecharla.

RESULTADOS.

1- Para anotar los resultados obtenidos en cada una de las pruebas, se escribe +++ cuando el resultado de la prueba sea muy positivo (el color sea bien definido, lo cual indica alta concentración de la biomolecula buscada). ++ cuando el resultado de la prueba sea regularmente positivo.+ para poco positivo y - para negativo (cuando no de el color esperado, lo que indicara ausencia de la biomolecula)

ALIMENTO                     CARBOHIDRATOS                          PROTEÍNAS
                                       LUGOL        FEHLING        BIURET        XANTOPROTEICA
1- Trigo                             ++                 ------                    -                        +++
2- Manzana                      +++                ------                 +++                     +++
3- Hígado                           -                   ------                    -                        +++
4- Habas                          +++                ------                 +++                      +++      
5- Queso                            -                   ------                    -                         +++
6- Zanahorias                    -                   ------                    -                         +++

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MIXQUIAHUALA HGO. 

TIEMPO DE SANGRADO. 

OBJETIVO:
Que al termino de la practica realice el tiempo de sangrado por cualquiera de los dos métodos existentes. 

INTRODUCCIÓN:
Un tiempo de sangrado normal indica una retracción normal de los capilares, y la existencia de un numero suficiente de plaquetas, con actividad normal.
La metamorfosis viscosa normal depende de un buen mecánico extrinseco de producción de Tromboplastina, por tanto, el tiempo de sangrado se alarga en la insuficiencia del factor VII. El tiempo de sangrado aumenta en forma característica en la púrpura trombocitopenica. 

METODOLOGÍA:
Se utilizará el "Método de Duke"

MATERIAL:
-Lanceta estéril.
-Torundas alcoholadas.
-Reloj cronometro.
-Papel filtro.

TÉCNICA:
1- Con una lanceta estéril, se practica en el borde inferior del lóbulo de la oreja una punción de 3 mm. de profundidad. Se pone en marcha el cronometro.
2- A intervalos de medio minuto, se aplica cuidadosamente sobre la gota de sangre el borde de un pequeño disco de papel filtro, cuidando de no tocar la piel. Esta maniobra por objeto es impedir que se forma un coagulo en la gota de sangre sobre la herida, pes los tiempo de sangrado resultarán anormalmente bajos.
3- Utilizando una nueva zona de papel filtro para cada secado de medio minuto, puede tenerse un registro conveniente del tiempo total (tiempo en minutos=numero de gotas divididas entre dos), Se toma como punto final al momento en el cal el papel filtro ya no absorbe sangre.

TIEMPO DE SANGRADO NORMAL CON EL MÉTODO DE DUKE:
De uno a tres minutos (sin embargo puede ser a veces hasta cinco minutos en sujetos normales).

MÉTODO DE IVY.

TÉCNICA:
1- Se coloca alrededor del brazo un manguito de esfindonometro con el cual se ejerce una presión de 40 mm. de Hg. que debe permanecer aquel durante toda la prueba.
2-Utilizando una lanceta estéril se hace a intervalos cortos tres punciones (entre 2.5 y 3.0 mm de profundidad), a lo largo de la cara flexora (interna) del antebrazo, evitando las venas visible. Se pone en marcha el cronometro. 
3- A intervalos de medio minuto, utilizando papel filtro se seca cuidadosamente cada gota de sangre en la misma forma que para el método de DUKE, el punto final es el mismo.


RESULTADO:  PACIENTE 1 - 2.50 min
                           PACIENTE 2 - 3.15 min

TIEMPO NORMAL DE SANGRADO EN EL MÉTODO DE IVY.

Entre 2 y 6 minutos (máximo de 7 minutos)

NOTA: El tiempo de sangrado representa sencilla y útil (aunque algo imprecisa) de la eficacia de las funciones capilares y de plaquetas en la hemostasia. Es preferible el método de IVY al de DUKE, pues las condiciones son mas constantes y se realizan en realidad tres pruebas. 

EVIDENCIAS:

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ROSA DE BENGALA.

(Antígeno Brucelar Amortiguado)

para el Diagnostico de Brucelosis.

Prueba de aglutinación rápida en placa para la detección temprana de aglutininas especificas de Brucella (Brucella melitensis, abortus y suis)

PRINCIPIO:

Se utiliza un antígeno de Brucella abortus biotipo 1 (cepa 99S o cepa 1119-3) acidificado regulado y teñido con Rosa de Bengala a un pH de 3.65+/- 0.05 para la detección de aglutininas especificas de Brucella. Esta prueba puede ser utilizada para un diagnostico temprano.

REACTIVOS:

Antígeno Rosa de Bengala

Control positivo de Brucella

Control negativo de Brucella

PRECAUCIONES:

Únicamente para uso de diagnostico In-vitro.

ALMACENAMIENTO Y ESTABILIDAD DE LOS REACTIVOS:

El reactivo y los controles son estables de 275-281 K (2-8 °C) hasta sus respectivas fechas de caducidad.

MATERIAL PROPORCIONADO:

-Placa de prueba. (Se recomienda que siempre se utilice una placa de vidrio para una mejor observación de los resultados)

-Pipetas desechables.

-El gotero incluido proporciona una gota de 30-40 ul

-Se sugiere utilizar pipetas automáticas preferentemente. 

MATERIAL REQUERIDO (NO PROVISTO)

-Cronometro

RECOLECCIÓN DE MUESTRA Y PREPARACIÓN:

Se recomienda que únicamente se utilice suero.

Evite la hemolisis o lipemia de las muestras ya que esto puede interferir con los resultados. Conservar la muestra de 275-288 K (2-8 °C) si no se va a realizar el estudio en el momento. 

PROCEDIMIENTO:

1- Llevar a temperatura ambiente el reactivo,controles y muestras de suero.

2- Utilizando la pipeta automática adicione 30 ul de la muestra del paciente en un circulo de la placa.

3- Mezcle suavemente el Antígeno Rosa de Bengala hasta que se encuentre totalmente homogéneo, después coloque 30 ul en la placa de la prueba en el mismo circulo donde se coloco la muestra del paciente, mezcle ambas con un aplicador. (usar un aplicador diferente para cada muestra. Repita este paso para cada muestra de paciente y controles.

4- Agitar la placa con movimientos rotatorios por 4 minutos.

5- Con la ayuda de una fuente de luz directa lea el resultado. Importante: Después de este tiempo la lectura ya no es valida.

RESULTADOS:

La lectura debe llevarse a cabo exactamente a los 4 minutos tomados a partir de que se comenzó a mezclar. Este en  un tiempo limite optimo en el que se da un espacio para la observación de ciertas aglutininas que se revelan lentamente y que de otra manera se pueden omitir, ademas de que se pueden omitir, ademas de que se pueden presentar reacciones no especificas. 

*No Aglutinación - Suero Negativo.

*Cualquier cantidad de Aglutinación - Presencia de anticuerpos específicos. Suero Positivo.

Esta es solo una prueba cualitativa de screening, la cal si resulta positiva debe ser confirmada mediante otra prueba cuantitativa para brucelosis como: Aglutinación Lenta Estándar o Aglutinación Lenta en Presencia de 2-Mercaptoetanol

RESULTADO:    MUESTRA 1 - NEGATIVO

SENSIBILIDAD: 25 Ul/mL.

Evidencias 

 

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MIXQUIAHUALA HGO.

ANALIZA Y FRACCIONA SANGRE CON FINES TRANSFUSIONALES.

VDRL.

Antígeno de cardiolipina para investigar reaginas de la sífilis en Suero sin inactivar, en Plasma y      L.C.R. (no requiere reconstitución)

Agente de Diagnóstico

INTRODUCCIÓN:

Treponema pallidum, la bacteria que causa la sífilis, una enfermedad que generalmente se transmite por vía sexual.

Su diagnóstico puede ser serológico, con lo que se pueden determinar dos clases de anticuerpos:

1.    Tipo “cardiolipina”.- No treponema e inespecíficos.

2.    Antitreponemas específicos.

La prueba realizada Venereal Disease Research Laboratory VDRL se le conoce como una prueba para sífilis no-treponémica. Es parte de la exploración inicial de la sífilis e iniciar un tratamiento. Con  el método cualitativo empleando la  placa presenta floculación, si se presenta el caso se lleva a cabo el método cuantitativo con el o los sueros positivos.

También se emplea en el cuidado prenatal del embarazo, así como parte de los estudios de laboratorio prenatales.

MATERIAL:

•     Placa cóncava
•      Puntillas
•     Aguja No. 21 sin bisel
•     Cronómetro

EQUIPO:

•   ¨Pipeta semiautomática
• Microscopio
• Muestra
•    Suero (Obtener 3 ml. de sangre por punción venosa, centrifugar y separar el suero)
• Reactivo Antígeno VDRL y los Sueros de Controles (almacenados 2-8°C)

      PROCEDIMIENTO:

    

  MÉTODO CUALITATIVO.

1. Depositar 0.05 ml. de suero problema en un anillo de la placa cóncava.

2. En otro anillo colocar una gota de suero control positivo y en el anillo siguiente una gota 

de suero control negativo, extendiendo dentro de los mismos.

3. Añadir una gota del antígeno en suspensión previamente resuspendido en cada muestra 

con la aguja N.21

4. Colocar la placa sobre un agitador mecánico a 180 rpm durante 4 min.

 (Nota: lo realizamos de forma manual a falta de agitador). 

Las pruebas que se realizan en un clima extremadamente seco pueden evaporarse, por lo tanto

la paca se cubre con la tapa de una caja Petri humedecida.

RESULTADOS:
      Paciente 1 : POSITIVO (Presencia de floculacion)

MÉTODO CUANTITATIVO.  
    

    1. Seleccionar los sueros positivos obtenidos en la prueba cualitativa.
    2. Colocar en una gradilla 6 tubos y numerarlos.
    3. Agregar a cada uno 0.5 ml. de solución salina al 9%.
    4. Depositar 0.5 ml. de suero al tubo 1 y mezclar.   
    5. Pasar 0.5 ml. del tubo 1 al tubo 2 mezclar.
    6. Pasar 0.5 ml. del tubo 2 al tubo 3 mezclar
    7. Continuar con este proceso hasta el tubo 6. 
    8. Depositar 0.05 ml. de cada una de las diluciones sobre los diferentes anillos de la placa 
cóncava.
    9. Añadir una gota del antígeno en suspensión estabilizado (VDRL) utilizando la aguja No.21 sin 
bisel a cada dilución.
    10. Colocar la placa sobre un agitador mecánico a 180 rpm. Durante 4 min.
    11. Leer al microscopio con objetivo seco débil 10x.
    Resultados e interpretación
    El título del suero problema será la última dilución que presente un resultado positivo. Ejemplo:
    Si se presenta floculación hasta el tubo 3 – dilución 1:8, por lo tanto el título será 1:8.
     Nota: 
    1.Sueros extremadamente turbios o hemolizados son insatisfactorios para la prueba.
    2. Sueros débiles positivos y fuertes evidencias clínicas de la enfermedad es conveniente 
efectuar la prueba cuantitativa, ya que ocasionalmente pueden presentar el fenómeno de 
prozona.
    3. Si la lectura del resultado no se realiza inmediatamente después de los 4 min. puede secarse 
la reacción y dificultad en la interpretación.
    4. El antígeno en suspensión debe estar a temperatura ambiente antes de ser utilizado.

    
  

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                                                              LABORATORIO CLÍNICO.

RECUENTO DE PLAQUETAS.

OBJETIVO: QUE EL ALUMNO APRENDA A CONTAR CORRECTAMENTE LAS PLAQUETAS.

INTRODUCCIÓN:

La plaquetas son los elementos formes mas pequeños de la sangre actúan en la hemostasia y en el mantenimiento de la integridad vascular, ademas de participar en el proceso de la coagulación sanguínea.

Las plaquetas son difíciles de contar debido a que son pequeñas y deben distinguirse de los restos celulares. Otra fuente de dificultad reside en su tendencia de adherirse al cristal, a cualquier cuerpo extraño y en particular unas de otras.

Para el conteo de plaquetas se utiliza oxalato de amonio como diluyente y se cuentan en los mismos cuadros para glóbulos rojos y el resultado se multiplica por 1000.

MATERIAL Y REACTIVOS:

1- Pipeta de thoma para glóbulos blancos.          
2- Microscopio.
3- Cámara de Neubauer.
4- Caja de petri con papel filtro.
5- Oxalato de amonio al 1%.
6- Sangre venosa con EDTA.

PROCEDIMIENTO:

1- Mezclar la sangre perfectamente.
2- Aspirar la muestra asta la marca 0.5
3- Limpiar con una gasa el exceso de sangre y aspirar el oxalato de amonio hasta la marca 11.
4- Mezclar de 3 a 5 min., desechar las 3 primeras gotas y llenar las cuadriculas de las cámara de Neubauer.
5- Dejar sedimentar de 10 a 15 min. la cámara en una caja petri con un disco de papel filtro húmedo en el fondo para evitar la evaporación.
6- Enfocar la cámara y contar las plaquetas en los mismos cuadros para glóbulos rojos empleando el objetivo 40 X.

7- Las plaquetas contadas se multiplican por 1000 para obtener el numero de plaquetas por mm.

                                                                             

 

VALOR DE REFERENCIA:

15000 a 45000/mm3

RESULTADOS:

285 000/mm3               NORMAL

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ANALIZA Y FRACCIONA SANGRE CON FINES TRANSFUSIONALES. 

     LABORATORIO CLÍNICO

DETERMINACIÓN DE AGLUTINOGENOS (TIPADO GLOBULAR)

PRINCIPIO: En la membrana del glóbulo rojo existen complejos químicos llamados antígenos que representan los llamado grupos o factores sanguíneos. 

Se sabe que estos complejos químicos se han generado de una sustancia llamada precursora, llamada sustancia H (humana). Sobre esta sustancia se adhieren carbohidratos en un orden determinado. Para la sangre de tipo cero "O" se unen dos moléculas de galactosa, una de mucosa, una de glucosa y una de glucosaina. 

Sobre esta cadena puede adherirse una nueva molécula y se cambia el tipo, si es de glucosamina se tiene el grupo "A" y si es de galactosa se tiene el grupo "B". Si se unen ambas moléculas en diversa posición se tiene el grupo AB:

Los primeros grupos sanguíneos que se descubrieron fueron los llamados ABO y actualmente se conocen muchos mas. 

El sistema Rh es independiente del sistema ABO, pero igual de importante en la tipificación sanguínea. 

Hay antígenos presentes en los eritrocitos de casi todas las personas y se les llama Universales, otros antígenos se han concentrado en una sola familia y se les llama familiares y se han encontrado algunos otros que pertenecen solamente a un individuo y se les llama personales.

La importancia de la determinación de los grupos sanguíneos y Rh en el laboratorio es en las transfusiones sanguíneas y en la eritroblastosis fetal. 

FACTOR Rh.

OBJETIVO: El alumno determinara el grupo sanguíneo y el factor Rh de una muestra sanguínea, utilizando los antisueros correspondientes y previa demostración correctamente.

INTRODUCCIÓN: Los grupos sanguíneos se han clasificado así por poseer características diferentes, estas características son los antígenos (Aglutinogenos) y los anticuerpos (Aglutininas) que son los responsables de las reacciones adversas inmunologicas en las transfusiones. 

MATERIAL:                                                                             REACTIVOS:

1 EQUIPO DE EXTRACCIÓN SANGUÍNEA                       SUERO ANTI A

1 PLACA DE VIDRIO EXCAVADA                                     SUERO ANTI B

APLICADORES DE MADERA (PALILLOS)                       SUERO ANTI D

LANCETA ESTÉRIL                                                             

MÉTODO PARA PORTAOBJETOS O PLACA

TÉCNICA: Se utiliza la punción cutánea por medio de la lanceta, se desecha la primera gota y se deposita 1 gota en cada una de las excavaciones de la placa en forma horizontal o marcar con letras A, B, y Rh, posteriormente se añade una gota de suero Anti A, Anti B y Anti D respectivamente. 

Mezclar perfectamente con un hisopo (aplicador) cada preparación (No contaminar las diferentes preparaciones). 

Agitar suavemente la placa con movimientos circulares durante 30 segundos aproximadamente.

Leer el resultado (una aglutinación macroscopica indicara la reacción)

Anti A               Anti B               Anti D               El grupo sanguíneo y su Factor será:

   +                         -                        +                                   A Rh Positivo

   +                         -                        -                                    A Rh Negativo 

   -                         +                        +                                   B Rh Positivo 

   -                         +                        -                                    B Rh Negativo

   +                        +                        +                                   AB Rh Positivo

   +                        +                        +                                   AB Rh Negativo

   -                         -                         +                                   O Rh Positivo

   -                         -                         -                                    O Rh Negativo 

En donde (+) Existencia de aglutinación.

                (-) Ausencia de aglutinación. 

INTERPRETACIÓN DE LOS RESULTADOS

Si existe aglutinación en el tubo "A" la sangre es tipo "A"

Si existe aglutinación en el tubo "B" la sangre es del tipo "B"

Si existe aglutinación en los tubos  A y B la sangre es del tipo "AB"

Si no existe aglutinación en los tubos A y B la sangre es del tipo "O"

Si existe aglutinación en el tubo Rh la sangre sera de factor Rh positivo.

Si no existe aglutinación en el tubo Rh la sangre sera de factor Rh negativo. 

GRUPO

SANGUÍNEO                                          ANTISUEROS

                                    ANTI A              ANTI B              ANTI AB              ANTI D

A                                      +                          -                          +                           -

B                                      -                           +                         +                           -

AB                                   +                          +                         +                           -

O                                      -                           -                          -                           -

D                                      -                           -                          -                           +

En donde (+) Existencia de aglutinación.

                (-) Ausencia de aglutinación.

RESULTADOS

Sharon      A Rh Positivo

Ilse            O Rh Positivo