CENTRO DE BACHILLERATO TECNOLÓGICO industrial y de servicios No. 199

"EMILIANO ZAPATA SALAZAR"

MIXQUIAHUALA HGO. 

TIEMPO DE SANGRADO. 

OBJETIVO:
Que al termino de la practica realice el tiempo de sangrado por cualquiera de los dos métodos existentes. 

INTRODUCCIÓN:
Un tiempo de sangrado normal indica una retracción normal de los capilares, y la existencia de un numero suficiente de plaquetas, con actividad normal.
La metamorfosis viscosa normal depende de un buen mecánico extrinseco de producción de Tromboplastina, por tanto, el tiempo de sangrado se alarga en la insuficiencia del factor VII. El tiempo de sangrado aumenta en forma característica en la púrpura trombocitopenica. 

METODOLOGÍA:
Se utilizará el "Método de Duke"

MATERIAL:
-Lanceta estéril.
-Torundas alcoholadas.
-Reloj cronometro.
-Papel filtro.

TÉCNICA:
1- Con una lanceta estéril, se practica en el borde inferior del lóbulo de la oreja una punción de 3 mm. de profundidad. Se pone en marcha el cronometro.
2- A intervalos de medio minuto, se aplica cuidadosamente sobre la gota de sangre el borde de un pequeño disco de papel filtro, cuidando de no tocar la piel. Esta maniobra por objeto es impedir que se forma un coagulo en la gota de sangre sobre la herida, pes los tiempo de sangrado resultarán anormalmente bajos.
3- Utilizando una nueva zona de papel filtro para cada secado de medio minuto, puede tenerse un registro conveniente del tiempo total (tiempo en minutos=numero de gotas divididas entre dos), Se toma como punto final al momento en el cal el papel filtro ya no absorbe sangre.

TIEMPO DE SANGRADO NORMAL CON EL MÉTODO DE DUKE:
De uno a tres minutos (sin embargo puede ser a veces hasta cinco minutos en sujetos normales).

MÉTODO DE IVY.

TÉCNICA:
1- Se coloca alrededor del brazo un manguito de esfindonometro con el cual se ejerce una presión de 40 mm. de Hg. que debe permanecer aquel durante toda la prueba.
2-Utilizando una lanceta estéril se hace a intervalos cortos tres punciones (entre 2.5 y 3.0 mm de profundidad), a lo largo de la cara flexora (interna) del antebrazo, evitando las venas visible. Se pone en marcha el cronometro. 
3- A intervalos de medio minuto, utilizando papel filtro se seca cuidadosamente cada gota de sangre en la misma forma que para el método de DUKE, el punto final es el mismo.


RESULTADO:  PACIENTE 1 - 2.50 min
                           PACIENTE 2 - 3.15 min

TIEMPO NORMAL DE SANGRADO EN EL MÉTODO DE IVY.

Entre 2 y 6 minutos (máximo de 7 minutos)

NOTA: El tiempo de sangrado representa sencilla y útil (aunque algo imprecisa) de la eficacia de las funciones capilares y de plaquetas en la hemostasia. Es preferible el método de IVY al de DUKE, pues las condiciones son mas constantes y se realizan en realidad tres pruebas. 

EVIDENCIAS:

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"EMILIANO ZAPATA SALAZAR"

MIXQUIAHUALA HGO.

ROSA DE BENGALA.

(Antígeno Brucelar Amortiguado)

para el Diagnostico de Brucelosis.

Prueba de aglutinación rápida en placa para la detección temprana de aglutininas especificas de Brucella (Brucella melitensis, abortus y suis)

PRINCIPIO:

Se utiliza un antígeno de Brucella abortus biotipo 1 (cepa 99S o cepa 1119-3) acidificado regulado y teñido con Rosa de Bengala a un pH de 3.65+/- 0.05 para la detección de aglutininas especificas de Brucella. Esta prueba puede ser utilizada para un diagnostico temprano.

REACTIVOS:

Antígeno Rosa de Bengala

Control positivo de Brucella

Control negativo de Brucella

PRECAUCIONES:

Únicamente para uso de diagnostico In-vitro.

ALMACENAMIENTO Y ESTABILIDAD DE LOS REACTIVOS:

El reactivo y los controles son estables de 275-281 K (2-8 °C) hasta sus respectivas fechas de caducidad.

MATERIAL PROPORCIONADO:

-Placa de prueba. (Se recomienda que siempre se utilice una placa de vidrio para una mejor observación de los resultados)

-Pipetas desechables.

-El gotero incluido proporciona una gota de 30-40 ul

-Se sugiere utilizar pipetas automáticas preferentemente. 

MATERIAL REQUERIDO (NO PROVISTO)

-Cronometro

RECOLECCIÓN DE MUESTRA Y PREPARACIÓN:

Se recomienda que únicamente se utilice suero.

Evite la hemolisis o lipemia de las muestras ya que esto puede interferir con los resultados. Conservar la muestra de 275-288 K (2-8 °C) si no se va a realizar el estudio en el momento. 

PROCEDIMIENTO:

1- Llevar a temperatura ambiente el reactivo,controles y muestras de suero.

2- Utilizando la pipeta automática adicione 30 ul de la muestra del paciente en un circulo de la placa.

3- Mezcle suavemente el Antígeno Rosa de Bengala hasta que se encuentre totalmente homogéneo, después coloque 30 ul en la placa de la prueba en el mismo circulo donde se coloco la muestra del paciente, mezcle ambas con un aplicador. (usar un aplicador diferente para cada muestra. Repita este paso para cada muestra de paciente y controles.

4- Agitar la placa con movimientos rotatorios por 4 minutos.

5- Con la ayuda de una fuente de luz directa lea el resultado. Importante: Después de este tiempo la lectura ya no es valida.

RESULTADOS:

La lectura debe llevarse a cabo exactamente a los 4 minutos tomados a partir de que se comenzó a mezclar. Este en  un tiempo limite optimo en el que se da un espacio para la observación de ciertas aglutininas que se revelan lentamente y que de otra manera se pueden omitir, ademas de que se pueden omitir, ademas de que se pueden presentar reacciones no especificas. 

*No Aglutinación - Suero Negativo.

*Cualquier cantidad de Aglutinación - Presencia de anticuerpos específicos. Suero Positivo.

Esta es solo una prueba cualitativa de screening, la cal si resulta positiva debe ser confirmada mediante otra prueba cuantitativa para brucelosis como: Aglutinación Lenta Estándar o Aglutinación Lenta en Presencia de 2-Mercaptoetanol

RESULTADO:    MUESTRA 1 - NEGATIVO

SENSIBILIDAD: 25 Ul/mL.

Evidencias 

 

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MIXQUIAHUALA HGO.

ANALIZA Y FRACCIONA SANGRE CON FINES TRANSFUSIONALES.

VDRL.

Antígeno de cardiolipina para investigar reaginas de la sífilis en Suero sin inactivar, en Plasma y      L.C.R. (no requiere reconstitución)

Agente de Diagnóstico

INTRODUCCIÓN:

Treponema pallidum, la bacteria que causa la sífilis, una enfermedad que generalmente se transmite por vía sexual.

Su diagnóstico puede ser serológico, con lo que se pueden determinar dos clases de anticuerpos:

1.    Tipo “cardiolipina”.- No treponema e inespecíficos.

2.    Antitreponemas específicos.

La prueba realizada Venereal Disease Research Laboratory VDRL se le conoce como una prueba para sífilis no-treponémica. Es parte de la exploración inicial de la sífilis e iniciar un tratamiento. Con  el método cualitativo empleando la  placa presenta floculación, si se presenta el caso se lleva a cabo el método cuantitativo con el o los sueros positivos.

También se emplea en el cuidado prenatal del embarazo, así como parte de los estudios de laboratorio prenatales.

MATERIAL:

•     Placa cóncava
•      Puntillas
•     Aguja No. 21 sin bisel
•     Cronómetro

EQUIPO:

•   ¨Pipeta semiautomática
• Microscopio
• Muestra
•    Suero (Obtener 3 ml. de sangre por punción venosa, centrifugar y separar el suero)
• Reactivo Antígeno VDRL y los Sueros de Controles (almacenados 2-8°C)

      PROCEDIMIENTO:

    

  MÉTODO CUALITATIVO.

1. Depositar 0.05 ml. de suero problema en un anillo de la placa cóncava.

2. En otro anillo colocar una gota de suero control positivo y en el anillo siguiente una gota 

de suero control negativo, extendiendo dentro de los mismos.

3. Añadir una gota del antígeno en suspensión previamente resuspendido en cada muestra 

con la aguja N.21

4. Colocar la placa sobre un agitador mecánico a 180 rpm durante 4 min.

 (Nota: lo realizamos de forma manual a falta de agitador). 

Las pruebas que se realizan en un clima extremadamente seco pueden evaporarse, por lo tanto

la paca se cubre con la tapa de una caja Petri humedecida.

RESULTADOS:
      Paciente 1 : POSITIVO (Presencia de floculacion)

MÉTODO CUANTITATIVO.  
    

    1. Seleccionar los sueros positivos obtenidos en la prueba cualitativa.
    2. Colocar en una gradilla 6 tubos y numerarlos.
    3. Agregar a cada uno 0.5 ml. de solución salina al 9%.
    4. Depositar 0.5 ml. de suero al tubo 1 y mezclar.   
    5. Pasar 0.5 ml. del tubo 1 al tubo 2 mezclar.
    6. Pasar 0.5 ml. del tubo 2 al tubo 3 mezclar
    7. Continuar con este proceso hasta el tubo 6. 
    8. Depositar 0.05 ml. de cada una de las diluciones sobre los diferentes anillos de la placa 
cóncava.
    9. Añadir una gota del antígeno en suspensión estabilizado (VDRL) utilizando la aguja No.21 sin 
bisel a cada dilución.
    10. Colocar la placa sobre un agitador mecánico a 180 rpm. Durante 4 min.
    11. Leer al microscopio con objetivo seco débil 10x.
    Resultados e interpretación
    El título del suero problema será la última dilución que presente un resultado positivo. Ejemplo:
    Si se presenta floculación hasta el tubo 3 – dilución 1:8, por lo tanto el título será 1:8.
     Nota: 
    1.Sueros extremadamente turbios o hemolizados son insatisfactorios para la prueba.
    2. Sueros débiles positivos y fuertes evidencias clínicas de la enfermedad es conveniente 
efectuar la prueba cuantitativa, ya que ocasionalmente pueden presentar el fenómeno de 
prozona.
    3. Si la lectura del resultado no se realiza inmediatamente después de los 4 min. puede secarse 
la reacción y dificultad en la interpretación.
    4. El antígeno en suspensión debe estar a temperatura ambiente antes de ser utilizado.

    
  

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                                                              LABORATORIO CLÍNICO.

RECUENTO DE PLAQUETAS.

OBJETIVO: QUE EL ALUMNO APRENDA A CONTAR CORRECTAMENTE LAS PLAQUETAS.

INTRODUCCIÓN:

La plaquetas son los elementos formes mas pequeños de la sangre actúan en la hemostasia y en el mantenimiento de la integridad vascular, ademas de participar en el proceso de la coagulación sanguínea.

Las plaquetas son difíciles de contar debido a que son pequeñas y deben distinguirse de los restos celulares. Otra fuente de dificultad reside en su tendencia de adherirse al cristal, a cualquier cuerpo extraño y en particular unas de otras.

Para el conteo de plaquetas se utiliza oxalato de amonio como diluyente y se cuentan en los mismos cuadros para glóbulos rojos y el resultado se multiplica por 1000.

MATERIAL Y REACTIVOS:

1- Pipeta de thoma para glóbulos blancos.          
2- Microscopio.
3- Cámara de Neubauer.
4- Caja de petri con papel filtro.
5- Oxalato de amonio al 1%.
6- Sangre venosa con EDTA.

PROCEDIMIENTO:

1- Mezclar la sangre perfectamente.
2- Aspirar la muestra asta la marca 0.5
3- Limpiar con una gasa el exceso de sangre y aspirar el oxalato de amonio hasta la marca 11.
4- Mezclar de 3 a 5 min., desechar las 3 primeras gotas y llenar las cuadriculas de las cámara de Neubauer.
5- Dejar sedimentar de 10 a 15 min. la cámara en una caja petri con un disco de papel filtro húmedo en el fondo para evitar la evaporación.
6- Enfocar la cámara y contar las plaquetas en los mismos cuadros para glóbulos rojos empleando el objetivo 40 X.

7- Las plaquetas contadas se multiplican por 1000 para obtener el numero de plaquetas por mm.

                                                                             

 

VALOR DE REFERENCIA:

15000 a 45000/mm3

RESULTADOS:

285 000/mm3               NORMAL

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ANALIZA Y FRACCIONA SANGRE CON FINES TRANSFUSIONALES. 

     LABORATORIO CLÍNICO

DETERMINACIÓN DE AGLUTINOGENOS (TIPADO GLOBULAR)

PRINCIPIO: En la membrana del glóbulo rojo existen complejos químicos llamados antígenos que representan los llamado grupos o factores sanguíneos. 

Se sabe que estos complejos químicos se han generado de una sustancia llamada precursora, llamada sustancia H (humana). Sobre esta sustancia se adhieren carbohidratos en un orden determinado. Para la sangre de tipo cero "O" se unen dos moléculas de galactosa, una de mucosa, una de glucosa y una de glucosaina. 

Sobre esta cadena puede adherirse una nueva molécula y se cambia el tipo, si es de glucosamina se tiene el grupo "A" y si es de galactosa se tiene el grupo "B". Si se unen ambas moléculas en diversa posición se tiene el grupo AB:

Los primeros grupos sanguíneos que se descubrieron fueron los llamados ABO y actualmente se conocen muchos mas. 

El sistema Rh es independiente del sistema ABO, pero igual de importante en la tipificación sanguínea. 

Hay antígenos presentes en los eritrocitos de casi todas las personas y se les llama Universales, otros antígenos se han concentrado en una sola familia y se les llama familiares y se han encontrado algunos otros que pertenecen solamente a un individuo y se les llama personales.

La importancia de la determinación de los grupos sanguíneos y Rh en el laboratorio es en las transfusiones sanguíneas y en la eritroblastosis fetal. 

FACTOR Rh.

OBJETIVO: El alumno determinara el grupo sanguíneo y el factor Rh de una muestra sanguínea, utilizando los antisueros correspondientes y previa demostración correctamente.

INTRODUCCIÓN: Los grupos sanguíneos se han clasificado así por poseer características diferentes, estas características son los antígenos (Aglutinogenos) y los anticuerpos (Aglutininas) que son los responsables de las reacciones adversas inmunologicas en las transfusiones. 

MATERIAL:                                                                             REACTIVOS:

1 EQUIPO DE EXTRACCIÓN SANGUÍNEA                       SUERO ANTI A

1 PLACA DE VIDRIO EXCAVADA                                     SUERO ANTI B

APLICADORES DE MADERA (PALILLOS)                       SUERO ANTI D

LANCETA ESTÉRIL                                                             

MÉTODO PARA PORTAOBJETOS O PLACA

TÉCNICA: Se utiliza la punción cutánea por medio de la lanceta, se desecha la primera gota y se deposita 1 gota en cada una de las excavaciones de la placa en forma horizontal o marcar con letras A, B, y Rh, posteriormente se añade una gota de suero Anti A, Anti B y Anti D respectivamente. 

Mezclar perfectamente con un hisopo (aplicador) cada preparación (No contaminar las diferentes preparaciones). 

Agitar suavemente la placa con movimientos circulares durante 30 segundos aproximadamente.

Leer el resultado (una aglutinación macroscopica indicara la reacción)

Anti A               Anti B               Anti D               El grupo sanguíneo y su Factor será:

   +                         -                        +                                   A Rh Positivo

   +                         -                        -                                    A Rh Negativo 

   -                         +                        +                                   B Rh Positivo 

   -                         +                        -                                    B Rh Negativo

   +                        +                        +                                   AB Rh Positivo

   +                        +                        +                                   AB Rh Negativo

   -                         -                         +                                   O Rh Positivo

   -                         -                         -                                    O Rh Negativo 

En donde (+) Existencia de aglutinación.

                (-) Ausencia de aglutinación. 

INTERPRETACIÓN DE LOS RESULTADOS

Si existe aglutinación en el tubo "A" la sangre es tipo "A"

Si existe aglutinación en el tubo "B" la sangre es del tipo "B"

Si existe aglutinación en los tubos  A y B la sangre es del tipo "AB"

Si no existe aglutinación en los tubos A y B la sangre es del tipo "O"

Si existe aglutinación en el tubo Rh la sangre sera de factor Rh positivo.

Si no existe aglutinación en el tubo Rh la sangre sera de factor Rh negativo. 

GRUPO

SANGUÍNEO                                          ANTISUEROS

                                    ANTI A              ANTI B              ANTI AB              ANTI D

A                                      +                          -                          +                           -

B                                      -                           +                         +                           -

AB                                   +                          +                         +                           -

O                                      -                           -                          -                           -

D                                      -                           -                          -                           +

En donde (+) Existencia de aglutinación.

                (-) Ausencia de aglutinación.

RESULTADOS

Sharon      A Rh Positivo

Ilse            O Rh Positivo 

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No.199

 REALIZA ANÁLISIS HEMATOLOGICOS DE SERIE BLANCA Y HEMOSTASIA.

                                                                  LABORATORIO CLÍNICO

RECUENTO DIFERENCIAL DE LEUCOCITOS

INTRODUCCIÓN:

El recuento diferencial de leucocitos consiste en reconocer y valorar las proporciones relativas de las distintas variedades de glóbulos blancos que se observan en un frotis teñido de sangre.

Al conocer la proporción de las células sanguíneas que estas presentes en el torrente sanguíneo cualquier trastorno patológico que altere el sistema hematopoyetico podría verse reflejado en un cambio de la proporción de una especie celular. Para el recuento diferencial se tiene que observar un mínimo de 100 leucocitos.

Hay varios métodos de recuento diferencial de leucocitos pero el mas utilizado es el de almena y en linea. 

MATERIAL Y REACTIVOS:

1. Frotis sanguíneo teñido.
2. Microscopio.
3. Aceite de inmersión.
4. Un contador de células.

 PROCEDIMIENTO:

1. Se coloca el frotis en el microscopio y se enfoca.
2. Se le agrega una gota de aceite de inmersión y se observa con el objetivo de 100X.
3. Si el recuento se hace en linea se empieza en un borde del frotis hasta el otro borde en linea paralela hasta contar 100 leucocitos.
4. Se van contando los mononucleares (monósitos y linfocitos) y los polimorfonucleares (neutrófilos, eosinófilos y basófilos) según su morfología.
5. Se reportan en % (valor relativo) o en valor absoluto (mm3)

VALORES DE REFERENCIA.

                                        ADULTOS                                                     NIÑOS

LINFOCITOS:                 20-55%                                                          20-50%

MONOCITOS:                  2-6%                                                              0-9%

EOSINOFILOS:                1-5%                                                              0-8%

BASOFILOS:                    0-1%                                                              0-1%

NEUTROFILOS:             45-70%                                                          20-60%

BANDAS:                          0-5%                                                              1-6%

RESULTADOS

LINFOCITOS:               34%       

MONOCITOS:               4%     

EOSINOFILOS:             2%   

BASOFILOS:                 1%           

NEUTROFILOS:            53%   

BANDAS:                      6%

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REALIZA ANÁLISIS HEMATOLÓGICOS DE SERIE BLANCA Y HEMOSTASIA. 

        

     LETICIA ORTIZ AGUILAR                                          5 DM   LABORATORIO CLINICO.

CONTEO DE LEUCOCITOS.

INTRODUCCIÓN:
El conteo de los elementos formes de la sangre es indispensable para la hematología diagnostica. Para contar los leucocitos se diluye una cantidad exacta de sangre con el liquido de Turk, que es una solución hipotonica que destruye a los eritrocitos y conserva la estructura de los leucocitos, esta mezcla se coloca en una cámara de Neubauer y se cuenta el numero de células en los cuadros indicados.

MATERIAL Y REACTIVOS:

1.- Una pipeta de thoma para glóbulos blancos.            
2.- Una cámara de Neubauer.
3.- Un microscopio.
4.- Solución de Turk.
5.- Gasas.
6.- Sangre venosa con EDTA.

PROCEDIMIENTO:
1.- Obtener sangre venosa con EDTA y mezclar perfectamente.
2.- Aspirar sangre con la pipeta de thoma asta la marca 0.5.
3.- Limpiar la parte externa de la pipeta con gasa o papel absorbente.
4.- Aspirar liquido de Turk hasta la marca 11.
5.- Retirar la boquilla de la pipeta y sellar los extremos con papel parafilm.
6.- Agitar la pipeta de thoma de 3 a 5 min. y preparar la cámara con el cubrehematímetro.
7.- Descartar las primeras 3 gotas y llenar la cámara por capilaridad por uno de los bordes del cubrehematímetro, sin que se formen burbujas o sobrepasen los canales de la cámara.

8.- Dejar reposar de 3 a 5 min la cámara con la muestra.

9.- Enfocar la cámara de 1 microscopio y contar los leucocitos con el objetivo seco débil en 64 cuadros de las 4 cuadriculas de los extremos.
10.- Multiplicar el numero de leucocitos contados por 50.

VALOR DE REFERENCIA:
5000 a 10000/mm3

RESULTADOS OBTENIDOS:

* Johana         5853 Leu/mm3            

*Eduardo      7150 Leu/mm3            

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CONCLUSIÓN 

Los leucocitos son las células sanguíneas que dentro del organismo participan desarrollando diferentes funciones como son: fagocitosis, defensa inmunológica específica o inespecífica.
El recuento leucocitario representa el número de leucocitos en un litro  de sangre completa. La cuantificación o recuento de leucocitos es muy importante para el diagnóstico de enfermedades.
Con esta practica aprenderemos  a realizar y aplicar la metodología para un recuento de Leucocitos por milímetro cúbico de sangre e interpretar el resultado.

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Practica #5

Reticulocitos

OBJETIVO: Que el alumno aprenda a identificar y cuantificar correctamente a los reticulocitos.

INTRODUCCIÓN: Los reticulocitos son eritrocitos jóvenes y contienen en su interior RNA-ribosonal el cual puede observarse en forma de red (De ahí su nombre) mediante un colorante supravital.

Cuando en la medula ósea aumenta la eritropoyesis, aumenta también el número de reticulocitos que salen hacia la circulación.

MATERIAL, REACTIVOS Y EQUIPO

o   Sangre venosa con EDTA.

o   Colorante de azul de cresil brillante o nuevo azul de metileno.

o   Tubos de ensaye.

o   Portaobjetos.

o   Pipetas Pasteur  tallo corto con bulbo.

o   Baño maría.

o   Microscopio.

o   Aceite de inmersión.

PROCEDIMIENTO

1. 1. Mezclar la muestra sanguínea y en un tubo de ensaye colocar 5 gotas con una pipeta pasteur.
2.            Agregarle 5 gotas del colorante con una pipeta pasteur y mezclar
3.            Incubar el tubo de ensaye a  37º C  durante 15 minutos en el baño maria.
4.           Mezclar la suspensión y realizar un frotis en portaobjetos.
5.           Dejarlo secar a temperatura ambiente, agregarle una gota de aceite de inmersión y observar    con el objetivo 100 X.

Buscar células que presenten una red con coloración azul (reticulocitos). Contar 1000  eritrocitos en diferentes partes del frotis e ir registrando el número de reticulocitos  observados.

EVIDENCCIAS

 

 

RESULTADOS

 :

  Numero de reticulocitos observados x 100

                                    Número total de eritrocitos

 

 32 x 100  =   3200  = 3.3% 

   1000          1000

VALORES DE REFERENCIA:                                

Adultos:    0.5.-2.0 %

 Niños:        2.5-6.5%

RESULTADOS:

Muestra 1:   1.3% 

Muestra 2:    3.3%

CONCLUSIÓN

El numero de reticulocitos en la sangre es un signo de la rapidez con la cual están siendo producidos y liberados por parte de la médula ósea.

 Por eso es muy importante realizar esta practica para aprender a realizar el conteo de reticulositos de la forma correcta.

ya que nos sirve para saber si nuestro nivel de reticulositos esta bajo, alto o en estado normal.

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HEMATOCRITO

INTRODUCCION:

El hematocrito es el volumen que ocupan los eritrocitos en una mestra sanguínea y se expresa en porcentaje.

La determinación de hematocrito es un método sencillo y confiable para detectar anemia o policitemia.

El hematocrito se puede determinar por dos métodos:

·         

       MACROMETODO (WINTROBE)

·         MICROMETODO.

MATERIAL Y REACTIVOS                                

·         Tubo de Wintrobe.

·         Tubo capilar.

·         Plastilina.

·         Centrifuga.

·         Pipeta pasteur tallo largó.

·         Equipo para venopunción.

·         Lector para hemara venopuncion.

·         )

·         s metodos_emia o policitemia.

·         na mestra sanguinea tocrito o regla.

·         Sangre venosa.

TECNICA (MACROMETODO)

1.-Mezclar la muestra sanguínea suavemente y con una pipeta pasteur o canula llenar el tubo de wintrobe, colocando la punta de la pipeta hasta el fondo del tubo, la punta de la pipeta se va elevando pero permaneciendo por debajo del menisco de sangre para evitar la formación de burbujas o espuma.

2.-El tubo se llena hasta la marca 100 con la muestra sanguínea y se pone a centrifugar durante 30 minutos a 3000 r.p.m.

3.-Se efectua la lectura. 

TÉCNICA (MICROMETODO)

1.- Mezclar la muestra sanguínea adecuadamente y llenar un tubo capilar hasta 3/4 partes.

2.- El extremo vació que no estuvo en contacto con la sangre se sella con plastilina o calor.

3.- El tubo con la muestra sanguínea se coloca en la microcentrifuga a 10,000 r.p.m. 

4.- Leer el porcentaje de hematocrito en el lector o medirlo con una regla. 

EVIDENCIAS 

 

 

RESULTADOS

Muestra 1:    Micrometodo - 47%

                    Macrometodo - 65%

Muestra 2:     Micrometodo - 44%

                    Macrometodo - 43%

conclusión  

 Durante esta practica aprendimos a realizar el hematocrito que es importante para poder determinar si nuestro paciente presenta anemia o policitemia.